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Die Erreger der kaninen Babesiose werden von Zecken auf den Hund übertragen.
Die kanine Babesiose ist zwar eine an Bedeutung zunehmende Erkrankung, doch keine neue Erkrankung. Ihre Erreger werden schon immer durch Zecken übertragen, weshalb einer guter Zeckenschutz schon lange ein wichtiger Bestandteil der Hundehaltung war. Doch durch den Klimawandel wird die Zeckenpopulation immer größer und vor allem teilweise ganzjährig zur Gefahr. Aber warum ist die kanine Babesiose so gefährlich und wie wird sie übertragen? Wie sieht eine gute Prophylaxe aus?
Zecken als Vektoren
In Zentraleuropa (Deutschland, Österreich und der Schweiz) sind einige der durch Vektoren übertragenen Krankheiten noch nicht endemisch. Die Babesiose des Hundes gehört weltweit zu den bedeutendsten Blutparasitosen und zählte lange zu den typischen Reiseerkrankungen, sie tritt jedoch bei Hunden in Zentraleuropa zunehmend auch autochthon auf. Erreger der Erkrankung sind Protozoen der Gattung Babesia. Diese treten weltweit auf und werden primär durch blutsaugende Zecken auf verschiedene Wirbeltiere [1] und Menschen übertragen. Die ersten Berichte über Mikroorganismen in den Erythrozyten von Klauentieren mit Hämoglobinurie reichen bis Ende des 19. Jahrhunderts zurück [2]. Der rumänische Forscher Dr. Victor Babeş gilt als Entdecker der Gattung Babesia. Nach seiner Entdeckung der Babesia ovis und Babesia bovis dauerte es nicht lange, bis die ersten Beschreibungen von Infektionen bei Hunden in Italien auftraten [3].
Die verschiedenen Babesien-Arten sind gemeinhin an unterschiedliche Arten von Zecken adaptiert. Die Parasiten befallen die Erythrozyten und führen je nach Parasitendichte zu einer mehr oder minder ausgeprägten Hämolyse. Eine Infektion kann bei Hunden mit einer erheblichen Morbidität und Mortalität einhergehen, wobei die klinischen Anzeichen und Pathogenese ähnlich denen der Malaria des Menschen sind. Daher wird die Krankheit auch heute noch zuweilen als „Hundemalaria“ bezeichnet [4] – [6]. Die Erreger der Malaria des Menschen (Plasmodium spp.) werden jedoch durch den Stich von Gabel- oder Fiebermücken (Gattung Anopheles) übertragen, weshalb die Babesiose früher auch als Piroplasmose bezeichnet wurde. Hunde gehören zu einem der vielen Ziele der zahlreichen Babesien-Spezies. Die Zecken treten hierbei sowohl als Vektor als auch als Reservoir auf [1]. Ferner ist bereits von einer vertikalen Übertragung von Babesia canis bei Hunden berichtet worden.
Babesien-Arten
Anfänglich wurden Babesien entsprechend ihrer mikroskopisch im Blutausstrich erkennbaren Morphologie innerhalb der Erythrozyten als „große“ Formen wie B. canis (Merozoiten-Größe 4 – 5 µm) und „kleine“ Formen wie B. gibsoni (Merozoiten-Größe 1 – 2 [3] µm) klassifiziert [7]. Erst später wurden (Unter-)Arten von großen und kleinen Babesien eingeführt. Diese unterscheiden sich bezüglich Morphologie, Zecken-Vektoren, geografischer Verteilung und Pathogenität. Erst mit der Einführung molekularer Phylogenie-Analysen zur Klärung der evolutionären Verwandtschaftsverhältnisse von Organismen – insbesondere des 18S-rRNA-Gens wie in Schnittger et al. [8] und Lack et al. [9] beschrieben –, wurden folgende Subspezies in der Tat als eigenständige Spezies klassifiziert:
- B. canis
- B. rossi
- B. vogeli
Bis jetzt wurden 3 kleine, beim Hund klinisch relevante Babesien beschrieben:
- B. gibsoni
- B. vulpes (früher: Babesia microti-like, B. annae), [10], [11]
- B. conradae [12]
In den letzten Jahren erlaubten molekulare Verfahren die Identifikation weiterer für den Hund infektiöser Spezies von Babesien, sodass derzeit mindestens 9 genetisch unterschiedliche Arten bekannt sind. Ergänzend wurde u. a. eine weitere „große“ Form der Babesien-Spezies namens B. bigemina in North Carolina (USA) beschrieben [13].
Welche Spezies von Babesien können Hunde in Zentraleuropa infizieren?
In Südosteuropa überlappt die Verteilung von B. canis teilweise mit der von B. vogeli. Nach Duh et al. [14] ist der Erreger mit der größten klinischen Relevanz für den Hund zum aktuellen Zeitpunkt jedoch B. canis, was auch für Zentraleuropa zutrifft. Durch Nachweise in Ixodes-Zecken und Füchsen konnte belegt werden, dass kleine Formen wie etwa B. vulpes [15] ebenfalls an Bedeutung gewinnen [16]. Es bleibt jedoch zu klären, ob diese Funde auch für Hunde eine Relevanz aufweisen [17].
Gibt es neben dem Zeckenstich weitere Übertragungswege?
Babesien können vertikal und über direkten, vektorunabhängigen Kontakt wie Blut und Speichel (insbesondere bei B. gibsoni) übertragen werden. Brandao et al. [18] sowie Boozer u. Macintire [19] haben in verschiedenen experimentellen Studien gezeigt, dass eine Übertragung durch Bluttransfusion möglich ist. Hinsichtlich B. gibsoni gibt es auch Spekulationen über eine direkte Hund-zu-Hund-Übertragung: Das Trägertier verfügt über Verletzungen der Maulschleimhaut und kann durch einen Biss einen gesunden Hund mit der Babesiose infizieren [20], [21], [22], [23], [24]. Es besteht keine Resistenz bei Junghunden, jedoch kann die Nachkommenschaft in endemischen Gebieten durch Antikörper der Mutter (transplazentare Übertragung) geschützt sein [19], [25], [26], [27], [28], [29].
Wie kommt es zur geografischen Ausbreitung von Babesien und deren Hauptvektoren?
Die geografische Verteilung von Babesien ist stark schwankend und überwiegend abhängig von der Verteilung der übertragenden Zecken. Wie Barutzki et al. [30] belegt haben, wird die kanine Babesiose zunehmend in Deutschland und in der Schweiz endemisch [10], [17], [25], [31], [32], [33], [34]. Diese Ausbreitung scheint das Resultat multipler Faktoren zu sein. Hierzu zählen der Import von Hunden insbesondere aus süd- und osteuropäischen Ländern [35], [36], [37] und eine zunehmende Dichte an infizierten Zecken, die durch veränderte Umweltfaktoren, wie z. B. klimatische Veränderungen [16], [38], [39], neue geeignete Biotope zur Ansiedelung gefunden haben.
Eine Besonderheit von Babesia spp. liegt in den Möglichkeiten der Erregerübertragung von einem Entwicklungsstadium der Zecke zum nächsten (transstadial) oder zu etwa 10% transovariell auf die eigenen Nachkommen. Die vertikale Übertragung sorgt für eine lange Persistenz in einer Zeckenpopulation, auch wenn die Zecken in keinem Stadium an einem geeigneten Wirt saugen [40].
Merke
Die Übertragungszeit von Babesien beim Hund ist abhängig vom Geschlecht der Zecke und beträgt nach dem Festsaugen wenige Stunden bis ca. 2 Tage.
Die Inkubationszeit wird allgemein mit 7 – 20 Tagen p. i. angegeben, kann jedoch je nach Art und Stammvirulenz variieren [41], [42].
Hinsichtlich der „großen“ Babesien-Arten ist B. canis in den meisten zentraleuropäischen Ländern diagnostiziert worden. Dies hängt vornehmlich mit der Abhängigkeit von seinem Hauptvektor, der Bunt- oder Auwaldzecke (Dermacentor reticulatus, [Abb. 1]) ab [43], die kältere Temperaturen toleriert, jedoch ein warmes und feuchtes Klima für ihre Entwicklungs- und Reproduktionszyklen bevorzugt [44], [45], [46]. Die adulte Zecke parasitiert an Hunden, während sich juvenile Individuen (Larven und Nymphen) an wilden Nagern ernähren und endophil leben. Zu den beliebtesten Habitaten zählen Wegränder und Felder in der Nähe von Wäldern [47]. Der globale Klimawandel, milde Winter und früh einsetzendes Tauwetter zeigen einen direkten Effekt auf die Aktivität der Zeckenpopulationen und das Überleben der Wirtspopulation (Nagetiere), die sich entsprechend in der Zahl klinischer Infektionen mit Babesien widerspiegelt [48].
Abb. 1: Auwaldzecke (Dermacentor reticulatus), weiblich.
Babesia vogeli spielt als Erreger bei der Betrachtung Europas hauptsächlich in Südeuropa eine Rolle, die Praxisrelevanz in Deutschland bleibt fraglich. Eine Übertragung erfolgt durch die Braune Hundezecke (Rhipicephalus sanguineus, [Abb. 2]). Der Erreger führt häufig nur zu geringen Antikörpertitern und gilt für adulte Hunde als schwach virulent, kann aber bei prädisponierenden Faktoren (jungen Hunden, Immunsuppression) auch einen schweren Verlauf nehmen.
Kleine-Babesien-Spezies wurden in verschiedenen Ländern Europas diagnostiziert. Berichte von Infektionen mit B. gibsoni stammen vor allem aus Süd- und Osteuropa sowie einzelne klinische Fallberichte aus Deutschland [48], [49], wobei auch hier R. sanguineus neben Haemaphysalis (H. longicornis) als Zeckenvektor zugeordnet wird [50].
Abb. 2: Braune Hundezecke (Rhipicephalus sanguineus), Capitulum vom Männchen.
Besteht ein Gesundheitsrisiko für Menschen?
Bei der humanen Babesiose handelt es sich um eine seltene Erkrankung, bei der insbesondere 2 humanpathogene Babesien-Spezies beteiligt sind [51]:
- B. divergens (bei europäischen Rindern vorkommend)
- B. microti (parasitiert an kleinen Nagetieren in den Vereinigten Staaten)
Beide werden über den Gemeinen Holzbock (Ixodes ricinus) übertragen. Zudem gibt es vereinzelte Berichte von Varianten der genannten zoonotischen Spezies in Europa [52]. Infektionen mit B. divergens können je nach Immunstatus der erkrankten Person einen schweren klinischen Verlauf nehmen oder bei einem immunkompetenten Patienten mit milden bis subklinischen Symptomen auftreten [52].
Merke
Infektionen mit B. canis und B. gibsoni werden nicht als Zoonosen für den Menschen angesehen [51].
Die Datenlage ist jedoch lückenhaft, da Berichte von humaner Babesiose ohne sichere Identifikation einer ursächlichen Protozoen-Spezies vorliegen [53]. Ferner bestehen keine Hinweise darauf, dass bekannte zoonotische Babesien die Fähigkeit besitzen, Hunde zu infizieren.
Gibt es eine Rasse-, Alters- oder Geschlechtsprädisposition?
Hunde jedes Alters und jeder Rasse können an Babesiose erkranken. Eine größere Anzahl zuverlässiger Studien fehlt jedoch. Eine Studie aus Südafrika zeigte, dass insbesondere Gesellschafts- und Begleithunde ein niedrigeres Risiko aufwiesen, an Babesiose zu erkranken [54]. Eine eindeutige Erklärung hierfür gibt es nicht, jedoch wird über eine geringere Vektorexposition aufgrund der unterschiedlichen Haltungsbedingungen oder eine geringere genetische Empfindlichkeit diskutiert. Ältere Studien zeigten eine höhere Anfälligkeit für eine Infektion mit B. canis für den Deutschen Schäferhund und Ungarischen Hirtenhund [55] sowie eine kleine Anzahl anderer Rassen [56]. Weitere Berichte über eine mögliche Prädisposition anderer Babesien bestehen u. a. für B. vogeli bei Greyhounds und B. gibsoni bei American Pit Bull Terriern [23].
Prophylaxe - Was eignet sich am besten?
Um das Risiko einer Infektion mit Babesien oder mit anderen durch Zecken übertragbaren Krankheiten zu vermindern, ist eine Zeckenprophylaxe ratsam. Allerdings ist dieser Ansatz der Prophylaxe durch die Möglichkeit der horizontalen Erreger-Übertragung einiger Babesien-Arten erschwert. Zu den horizontalen Übertragungsmöglichkeiten zählt die Bluttransfusion. Bei kleinen Babesien wird auch eine direkte Hund-zu-Hund-Übertragung (Bisswunden, Speichel) insbesondere bei Kampfhunden angenommen [22], [23]. Die Prophylaxe schließt daher verschiedene Maßnahmen ein, die darauf abzielen, die Infektion oder die Krankheitsentwicklung im Zuge einer Infektion zu verhindern. Grundlage der Empfehlungen für die Bekämpfung von Ektoparasiten von Hunden bieten die ESCCAP-Guidelines [26].
Vektorprophylaxe
Für eine möglichst wirksame Vektorprophylaxe sind verschiedene Anti-Zecken-Mittel verfügbar. Ihre Wirksamkeit beruht auf verschiedenen Effekten:
- Repellent-Effekt: Der Parasit wird vom behandelten Wirt ferngehalten.
- Anti-feeding-Effekt: Der Parasit wird davon abgehalten, den Wirt zu stechen.
- Knock-down-Effekt: Der Parasit wird gelähmt.
- Letal-Effekt: Der Parasit wird getötet.
Neben täglicher adspektorischer Untersuchung und Entfernung vorhandener Zecken sind zur Zeckenbekämpfung eine Auswahl von Akariziden (Spot-On, Zeckenhalsbänder) mit oder ohne Repellent-Wirkung geeignet.
Zu den Akarizid-Halsbänder für Hunde mit Wirkung gegen Zecken und Zulassung in Deutschland und Österreich gehören z. B. Scalibor (Wirkstoff Deltamethrin, Wirkungsdauer ca. 5 – 6 Monate) oder Seresto (Wirkstoff Flumethrin/Imidacloprid, Wirkungsdauer ca. 7 – 8 Monate). Zudem gibt es eine Reihe von Spot-On-Produkten (Permethrin-haltige und Nicht-Permethrin-haltige Produkte), die sowohl zur Vorbeugung als auch zur Behandlung von Zecken eingesetzt werden. Das Präparat wird üblicherweise alle 4 Wochen auf das Tier aufgebracht und weist eine anhaltende akarizide Wirkung gegen Zecken auf, abhängig vom Akarizid kann die Wirkdauer jedoch gegen verschiedene Zeckenarten unterschiedlich sein.
Bei Reisen in endemische Gebiete (z. B. mediterrane Urlaubsländer, Ungarn) sollte eine Behandlung im 14-tägigen Rhythmus erfolgen. In einigen Anwendungsempfehlungen verschiedener Ektoparasitika ist beschrieben, dass in manchen Fällen Zecken, die zum Zeitpunkt der Behandlung bereits vorhanden sind, nicht sicher innerhalb der ersten 48 h abgetötet werden (z. B. Wirkstoffe Permethrin/Imidacloprid) bzw. nicht wie erwartet innerhalb von 24 – 48 Stunden nach Infestation abfallen (z. B. Wirkstoff Pyriprol). Diese Zecken bleiben dann angeheftet und sichtbar. Deswegen kann die Krankheitsübertragung durch Zecken auf den Hund nicht vollkommen ausgeschlossen werden. Es ist daher zu empfehlen, Zecken mechanisch vor der Behandlung zu entfernen ([Abb. 3]), [26], [27].
Abb.3: Zecke im Haarkleid eines Hundes.
Seit wenigen Jahren sind auch orale Anti-Zecken-Mittel als Kautablette für Hunde verfügbar. Es handelt sich hierbei um systemische Akarizide der Wirkstoffklasse der Isoxazoline. Aktuell sind 4 zugelassene Wirkstoffe – Afoxolaner, Fluralaner [28], Lotilaner und Sarolaner – als orale Anti-Zecken-Mittel (Wirkstoff Fluralaner auch als Spot-on) für den Hund erhältlich. Je nach Produkt hält die Wirkung gegen Zecken unterschiedlich lange an (4 – 12 Wochen) und besitzt abhängig vom Wirkstoff eine Abtötungsgeschwindigkeit („speed of kill“, im Folgenden als SOK bezeichnet) bei Zecken zwischen 8 und 48 Stunden. Der SOK der Isoxazoline ist zudem davon beeinflusst, ob die Zecke vor Anwendung auf dem Tier war [27], [29]. Die Übertragungszeit von Babesien beim Hund ist abhängig vom Geschlecht der Zecke und beträgt nach dem Festsaugen wenige Stunden bis ca. 2 Tage. Eine deutlich verkürzte Erregerübertragung, wie sie bei Dermacentor-Männchen (kurz nach dem Stich bei Dermacentor-Männchen, die bereits einmal Blut gesaugt hatten) vorkommen kann, wird so nicht sicher verhindert, da Isoxazoline keinen Repellent-Effekt besitzen.
Da die Babesiose eine unter Umständen lebensgefährliche Erkrankung darstellt, ist es wichtig, dass die Zeckenprophylaxe vor der ersten Exposition anfängt. Deshalb sind besonders schnell wirksame Akarizide mit repellierender Wirkung zu bevorzugen (Wirkstoffklasse der Pyrethroide z. B. Permethrin und Flumethrin), denn eine Zecke, die nicht zum Blutsaugen kommt, kann auch keine Krankheitserreger übertragen [26], [30]. Unter ungünstigen Bedingungen bieten auch Präparate mit Repellent-Effekt keinen 100%igen Schutz vor Übertragung von Infektionskrankheiten durch Ektoparasiten [27].
Merke
Die Zeckenprophylaxe sollte den gesamten Zeitraum abdecken, in dem Zecken aktiv sein können (in Zentraleuropa typischerweise von März bis Juni und von September bis November) und sich zudem nach dem jeweiligen Risikolevel (z. B. Gebiete mit hoher Zeckendichte, milde Winter) und Lebensstil des Hundes richten [26].
Dies bedeutet, dass in einigen Fällen zu einem ganzjährigen Zeckenschutz geraten werden sollte.
Gibt es eine Impfprophylaxe zur Vorbeugung einer kaninen Babesiose?
Für die Immunprophylaxe steht ein kommerzieller Impfstoff für Tiere zur Verfügung. Auf dem europäischen Markt erhältlich (Frankreich und Kroatien), in Deutschland aber aktuell nicht zugelassen (Stand August 2022) ist ein stammabhängiger (homologe Stämme) Impfschutz namens Pirodog (Merial) zum Schutz von Hunden gegen Infektionen mit B. canis [31]. Die Impfung ist nicht gegen alle B.-canis-Stämme gleich wirksam.
Der Impfschutz in französischen Endemiegebieten liegt bei etwa 80 – 90%, ist in anderen Gebieten jedoch geringer. Dieser Impfstoff enthält lösliche Parasiten-Antigene und induziert einen partiellen Schutz für Hunde, die noch keine Exposition mit B. canis erfahren haben (positiver AK-Titer bei etwa 75% der Tiere nach der Impfung). Eine Kreuzimmunität gegenüber anderen Babesia-Spezies wird nicht bewirkt. Im Weiteren sind unter www.pei.de (Paul-Ehrlich-Institut, Bundesinstitut für Impfstoffe) oder der Europäischen Produktdatenbank (https://medicines.health.europa.eu/veterinary/de) in der EU zugelassene Impfstoffe erfasst, die potenziell eingeführt werden können (die Genehmigungen sind durch die zuständigen Behörden in den Bundesländern zu erfragen).
Merke
Der zur Verfügung stehende Impfstoff verhindert nicht die Infektion, führt jedoch zu kürzeren und weniger schweren klinischen Krankheitsverläufen.
Eine Impfung sollte ab dem 5. Lebensmonat des Hundes erfolgen und muss jährlich aufgefrischt werden, ein Schutz vor anderen Babesien-Spezies besteht nicht [32], [33], [34], [35], [36]. An Impfstoffen mit einem breiteren Schutz auch gegen andere Babesien-Spezies wie B. gibsoni wird weiterhin geforscht [37], [38].
Gibt es andere Optionen zum Schutz vor einer kaninen Babesiose?
Das Risiko einer Babesiose lässt sich durch eine fachgerechte Zeckenprophylaxe am wirkungsvollsten reduzieren, dennoch wurden neben möglichen Impfungen auch Alternativen wie eine Chemoprophylaxe getestet.
Chemoprophylaxe
Die prophylaktische Verabreichung des Wirkstoffs Imidocarb ist i. d. R. direkt gegen den Erreger (große Babesien) gerichtet [39]. Für eine Chemoprophylaxe kann Imidocarbdipropionat (Carbesia, Imizol, Schering-Plough Animal Health) in einer Dosierung von 3 – 6 mg/kg s. c. oder i. m. einige Stunden vor Einreise in ein endemisches Gebiet verabreicht werden (Endemiegebiet von B. canis: Südeuropa bis nach Nordfrankreich, Polen und zunehmende Ausbreitung nach Nordosten). Die Angaben zur Schutzwirkung variieren zwischen 2 und 6 Wochen. In einem experimentellen Modell, in der Imidocarb (6 mg/kg) 1 Mal/Woche über 3 Wochen verabreicht worden ist, konnte hingegen keine Schutzwirkung festgestellt werden [40]. Eine detaillierte Übersicht zur aktuellen Verbreitung ist unter www.esccap.de oder www.esccap.ch zu finden. Diese Art der Prophylaxe kann für Hunde, die sich nur kurzfristig in einem Endemiegebiet aufhalten, zwar eine Möglichkeit darstellen, ist aber im Hinblick auf die potenziell starken Nebenwirkungen und die zu hinterfragende Schutzwirkung jedoch einer genauen Nutzen-Risiko-Abwägung (z. B. Jungtiere unter 6 Monaten, immunsupprimierten Hunden, insbesondere nach Splenektomie) zu unterziehen.
Verhaltensprophylaxe
Durch die richtige Verhaltensprophylaxe kann die Vektorexposition reduziert werden. Risikogebiete sollten während der Vektor-Aktivitätszeiten gemieden oder der Hund nach dem Spaziergang regelmäßig nach Zecken abgesucht werden, um neben dem Zeckenstich auch die orale Aufnahme und damit die Möglichkeit einer vertikalen Infektion über Zecken zu verhindern.
Fazit
Die Babesiose des Hundes zählt weltweit zu den veterinärmedizinisch bedeutendsten Blutparasitosen. Auch in Ländern mit bis vor kurzem niedriger Prävalenz nimmt die Zahl der klinisch manifesten Babesiosen bei Hunden zu. Die Gründe hierfür liegen u. a. im Reisetourismus, Import von Hunden aus dem Ausland und in der Zunahme infizierter Zecken, die als Endwirte und Vektoren fungieren. Obwohl die Zahl der weltweiten Fälle stetig zunimmt und im Laufe der Jahre wichtige Erkenntnisse gewonnen werden konnten, handelt es sich weiterhin um eine Erkrankung mit vielen Unbekannten.
Die Prävention und damit eine gute Prophylaxe sind deshalb wichtiger denn je. Ein effektives topisches Akarizid in Kombination mit einem Zeckenhalsband ist sehr wirkungsvoll, um einer Zecken-Exposition vorzubeugen. Auch orale Anti-Zecken-Mittel (Substanzklasse der Isoxazoline) weisen in Untersuchungen der Hersteller verschiedener Präparate sehr vielversprechende Ergebnisse hinsichtlich der Wirksamkeit und der Verhinderung von Infektionen mit vektorübertragenen Erregern (u. a. Babesia canis) auf [28]. Die Entwicklung neuer Impfstoffe wie der in Frankreich zugelassene Impfstoff gegen B. canis wird benötigt, insbesondere da es keine übergreifende Behandlungsmethode der verschiedenen Babesien-Spezies gibt. Weiterführende Forschung ist notwendig, um die Entwicklung neuer Präventions- und Behandlungsmethoden voranzubringen.
Die Originalartikel sind erschienen in:
Teil 1 bis Prophylaxe:
1 El-Bahnasawy MM, Khalil HH, Morsy TA. Babesiosis in an Egyptian boy acquired from pet dog, and a general review. J Egypt Soc Parasitol 2011; 41 (01) 99-108
2 Babes V. Sur lʼhemoglobinurie bactérienne du boeuf. C R Acad Sci Ser III Sci Vie 1888; 107: 692-694
3 Roncalli AR. The history of Italian parasitology. Vet Parasitol 2001; 98: 3-30
4 Jacobson LS, Clark IA. The pathophysiology of canine babesiosis: new approaches to an old puzzle. J S Afr Vet Assoc 1994; 65 (03) 134-145
5 Welzl C, Leisewitz AL, Jacobson LS. et al. Systemic inflammatory response syndrome and multiple-organ damage/dysfunction in complicated canine babesiosis. J S Afr Vet Assoc 2001; 72 (03) 158-162
6 Clark IA, Jacobson LS. Do babesiosis and malaria share a common disease process?. Ann Trop Med Parasitol 1998; 92 (04) 483-488
7 Patton WS. Preliminary report on a new piroplasm (Piroplasma gibsoni sp. nov.) found in the blood of the hounds of the Madras Hunt and subsequently discovered in the blood of the jackal Canis aureus. Bull Soc Pathol Exot 1910; 3: 274-280
8 Schnittger L, Rodriguez AE, Florin-Christensen M, Morrison DA. Babesia: a world emerging. Infect Genet Evol 2012; 12 (08) 1788-1809
9 Lack JB, Reichard MV, Van Den Bussche RA. Phylogeny and evolution of the Piroplasmida as inferred from 18S rRNA sequences. Int J Parasitol 2012; 42 (04) 353-363
10 Baneth G. Reclassification of Theileria annae as Babesia vulpes sp. nov. Parasit Vectors 2015; 8: 207
11 Zahler M, Rinder H, Schein E, Gothe R. Detection of a new pathogenic Babesia microti-like species in dogs. Vet Parasitol 2000; 89: 241-248
12 Kjemtrup AM, Wainwright K, Miller M. et al. Babesia conradae sp. nov., a small canine Babesia identified in California. Vet Parasitol 2006; 138: 103-111
13 Birkenheuer AJ. Detection and molecular characterization of a novel large Babesia species in a dog. Vet Parasitol 2004; 124(3 – 4): 151-160
14 Duh D, Tozon N, Petrovec M. et al. Canine babesiosis in Slovenia: molecular evidence of Babesia canis canis and Babesia canis vogeli. Vet Res 2004; 35 (03) 363-368
15 Baneth G, Cardoso L, Brilhante-Simoes P, Schnittger L. Establishment of Babesia vulpes n. sp. (Apicomplexa: Babesiidae), a piroplasmid species pathogenic for domestic dogs. Parasit Vectors 2019; 12: 129
16 Hartelt K, Pluta S, Oehme R, Kimmig P. Spread of ticks and tick-borne diseases in Germany due to global warming. Parasitol Res 2008; 103 (Suppl. 01) 109-116
17 Najm NA, Meyer-Kayser E, Hoffmann L. et al. A molecular survey of Babesia spp. and Theileria spp. in red foxes (Vulpes vulpes) and their ticks from Thuringia, Germany. Ticks Tick Borne Dis 2014; 5 (04) 386-391
18 Brandao LP, Hagiwara MK, Myiashiro SI. Humoral immunity and reinfection resistance in dogs experimentally inoculated with Babesia canis and either treated or untreated with imidocarb dipropionate. Vet Parasitol 2003; 114: 253-265
19 Boozer L, Macintire D. Babesia gibsoni: An emerging pathogen in dogs. Compendium on Continuing Education for the Practising Veterinarian–North American Edition 2005; 27 (01) 33-42
20 Jefferies R, Ryan UM, Jardine J. et al. Blood, Bull Terriers and Babesiosis: further evidence for direct transmission of Babesia gibsoni in dogs. Aust Vet J 2007; 85: 459-463
21 Jeagley TJ, Reichard MV, Hempstead JE. et al. Detection of Babesia gibsoni and the canine small Babesia ‚Spanish isolate‘ in blood samples obtained from dogs confiscated from dogfighting operations. J Am Vet Med Assoc 2009; 235: 535-539
22 Birkenheuer AJ, Correa MT, Levy MG, Breitschwerdt EB. Geographic distribution of babesiosis among dogs in the United States and association with dog bites: 150 cases (2000–2003). J Am Vet Med Assoc 2005; 227: 942-947
23 Birkenheuer AJ, Levy MG, Stebbins M. et al. Serosurvey of anti Babesia antibodies in stray dogs and American pit bull terriers and American staffordshire terriers from North Carolina. J Am Anim Hosp Assoc 2003; 39: 551-557
24 Trotta M, Carli E, Novari G. et al. Clinicopathological findings, molecular detection and characterization of Babesia gibsoni infection in a sick dog from Italy. Vet Parasitol 2009; 165: 318-322
25 Irwin PJ. Canine babesiosis: from molecular taxonomy to control. Parasit Vectors 2009; Suppl 1 (Suppl 1): S4
26 Ayoob AL, Hackner SG, Prittie J. Clinical management of canine babesiosis. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio) 2010; 20 (01) 77-89
27 Mierzejewska EJ, Welc-Faleciak R, Bednarska M. et al. The first evidence for vertical transmission of Babesia canis in a litter of Central Asian Shepherd dogs. Ann Agric Environ Med 2014; 21 (03) 500-503
28 Fukumoto S, Suzuki H, Igarashi I, Xuan X. Fatal experimental transplacental Babesia gibsoni infections in dogs. Int J Parasitol 2005; 35: 1031-1035
29 Eckert J, Friedhoff KT, Zahner H, Deplazes P. Lehrbuch der Parasitologie für die Tiermedizin. Stuttgart: Enke; 2005: 57
30 Barutzki D, Reule M, Scheunemann R. et al. Die Babesiose des Hundes. Dt Tierärztebl 2007; 55: 284-293
31 Zahler M, Rinder H, Schein E, Gothe R. Detection of a new pathogenic Babesia microti-like species in dogs. Vet Parasitol 2000; 89 (03) 241-248
32 Zahler M, Rinder H, Zweygarth E. et al. Babesia gibsoni of dogs from North America and Asia belong to different species. Parasitol 2000; 120 (04) 365-369
33 Beck R, Vojta L, Mrljak V. et al. Diversity of Babesia and Theileria species in symptomatic and asymptomatic dogs in Croatia. Int J Parasitol 2009; 39 (07) 843-848
34 Falkenö U, Tasker S, Osterman-Lind E, Tvedten HW. Theileria annae in a young Swedish dog. Acta Vet Scand 2013; 55: 50
35 Hinaidy HK, Tschepper P. Babesia canis in a dog in Austria. Wien Tierärztl Mschr 1979; 66: 302-304
36 Schwendenwein I. Canine babesiosis in Austria – review of clinical presentation, diagnosis and therapy with reference to four cases. Wien Tierärztl Mschr 1989; 76: 161-164
37 Daugschies A. Import von Parasiten durch Tourismus und Tierhandel. Dtsch tierärztl Wschr 2001; 108: 348-352
38 Heile C, Heydorn AO, Schein E. Dermacentor reticulatus (Fabricius, 1794) – Verbreitung, Biologie und Vektor von Babesia canis in Deutschland. Berl Münch Tierarztl Wochenschr 2006; 119(7 – 8): 330-334
39 Janjić F, Sarvan D, Tomanović S. et al. A short-term and long-term relationship between occurrence of acute canine babesiosis and meteorological parameters in Belgrade, Serbia. Ticks Tick Borne Dis 2019; 10: 101273
40 Deplazes P, Eckert J, von Samson-Himmelstjerna G, Zahner H. Lehrbuch der Parasitologie für die Tiermedizin. 3. Aufl. Stuttgart: Enke; 2013
41 Deplazes P, Staebler S, Gottstein B. Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes. Schweiz Arch Tierheilk 2006; 148: 447-461
42 Belton D. Import risk analysis: Babesia gibsoni in dogs (Canis familiaris) and dog semen. Wellington (NZ): Biosecurity Authority, MAF 2003.
43 Karbowiak G. The occurrence of the Dermacentor reticulatus tick-its expansion to new areas and possible causes. Ann Parasitol 2014; 60 (01) 37-47
44 Mehlhorn H. Light and electron microscopic study on developmental stages of Babesia canis within the gut of the tick Dermacentor reticulatus. J Parasitol 1980; 66 (02) 220-228
45 Martinod S, Brossard M, Moreau Y. Immunity of dogs against Babesia canis, its vector tick Dermacentor reticulatus, and Ixodes ricinus in endemic area. J Parasitol 1985; 71: 269-273
46 Uilenberg G. Babesia – a historical overview. Vet Parasitol 2006; 138(1 – 2): 3-10
47 Rubel F, Brugger K, Monazahian M. et al. The first German map of georeferenced ixodid tick locations. Parasit Vectors 2014; 7: 477
48 Hartelt K, Rieker T, Oehme RM. et al. First evidence of Babesia gibsoni (Asian genotype) in dogs in Western Europe. Vector Borne Zoonotic Dis 2007; 7: 163-166
49 Teodorowski O, Kalinowski M, Winiarczyk D. et al. Babesia gibsoni Infection in Dogs – A European Perspective. Animals 2022; 12 (06) 730
50 Chao LL, Liao HT, Ho TY, Shih CM. First detection and molecular identification of Babesia gibsoni from Rhipicephalus sanguineus ticks. Acta Trop 2017; 166: 356-362
51 Homer MJ, Aguilar-Delfin I, Telford SR. et al. Babesiosis. Clin Microbiol Rev 2000; 13: 451-469
52 Yabsley MJ, Shock BC. Natural history of Zoonotic Babesia: Role of wildlife reservoirs. Intern J Parasitol Parasit Wild 2013; 2: 18-31
53 Kjemtrup AM, Conrad PA. Human babesiosis: an emerging tick-borne disease. Int J Parasitol 2000; 30: 1323-1337
54 Mellanby RJ, Handel IG, Clements DN. et al. Breed and sex risk factors for canine babesiosis in South Africa. J Vet Intern Med 2011; 25: 1186-1189
55 Hornok S, Edelhofer R, Farkas R. Seroprevalence of canine babesiosis in Hungary suggesting breed predisposition. Parasitol Res 2006; 99: 638-642
56 Martinod S, Brossard M, Moreau Y. Immunity of dogs against Babesia canis, its vector tick Dermacentor reticulatus, and Ixodes ricinus in endemic area. J Parasitol 1985; 71 (03) 269-273
57 Kraje AC. Canine haemobartonellosis and babesiosis. Compend Contin Educ 2001; 23: 310-318
58 Solano-Gallego L, Capri A, Pennisi MG. et al. Acute febrile illness is associated with Rickettsia spp infection in dogs. Parasit Vectors 2015; 8: 216
59 Eichenberger RM, Riond B, Willi B. et al. Prognostic markers in acute Babesia canis infections. J Vet Intern Med 2016; 30: 174-182
60 Matijatko V, Torti M, Schetters TP. Canine babesiosis in Europe: how many diseases?. Trends Parasitol 2012; 28 (03) 99-105
61 Milanović Z, Vekić J, Radonjić V. et al. Association of acute Babesia canis infection and serum lipid lipoprotein, and apoprotein concentrations in dogs. J Vet Intern Med 2019; 33: 1686-1694
62 Schetters TP, Kleuskens JA, Van De Crommert J. et al. Systemic infl ammatory responses in dogs experimentally infected with Babesia canis; a haematological study. Vet Parasitol 2009; 162: 7-15
63 Birkenheuer AJ, Levy MG, Breitschwerdt EB. Efficacy of combined atovaquone and azithromycin for therapy of chronic Babesia gibsoni (Asian genotype) infections in dogs. J Vet Intern Med 2004; 18: 494-498
64 Miro G, Checa R, Paparini A. et al. Theileria annae (syn. Babesia microti-like) infection in dogs in NW Spain detected using direct and indirect diagnostic techniques: clinical report of 75 cases. Parasit Vectors 2015; 8: 217
65 Vannier EG, Diuk-Wasser MA, Mamoun CB, Krause PJ. Babesiosis. Infect Dis Clin North Am 2015; 29: 357-370
66 Solano-Gallego L, Baneth G. Babesiosis in dogs and cats – expanding parasitological and clinical spectra. Vet Parasitol 2011; 181: 48-60
67 Solano-Gallego L, Trotta M, Carli E. et al. Babesia canis canis and Babesia canis vogeli clinicopathological findings and detection by means of PCR-RFLP in blood from Italian dogs suspected of tick-borne disease. Vet Parasitol 2008; 157: 211-221
68 Zygner W, Gójska-Zygner O, Bąska P, Długosz E. Increased concentration of serum TNF alpha and its correlations with arterial blood pressure and indices of renal damage in dogs infected with Babesia canis. Parasitol Res 2014; 113 (04) 1499-1503
69 Zygner W, Gójska-Zygner O. Increased serum urea to creatinine ratio and its negative correlation with arterial pressure in canine babesiosis. Acta Parasitol 2014; 59 (03) 548-551
70 Bohm M, Leisewitz AL, Thompson PN, Schoeman JP. Capillary and venous Babesia canis rossi parasitaemias and their association with outcome of infection and circulatory compromise. Vet Parasitol 2006; 141: 18-29
71 Ogo N, Okubanjo O, Kamani J. Current Status of Canine Babesiosis and the Situation in Nigeria: A Review. Nigerian Vet J 2011; 32 (02) 69-78
72 Globokar Vrhovec M. Retrospektive Analyse der parasitologischen Untersuchungs-ergebnisse eines privaten Untersuchungslabors: Intestinale, respiratorische und vektorübertragene Parasitosen bei Hunden und Katzen in Deutschland (2004 – 2006) [Dissertation]. Giessen: Justus-Liebig-Universität Giessen; 2013
73 Jongejan F, Fourie JJ, Chester ST. et al. The prevention of transmission of Babesia canis canis by Dermacentor reticulatus ticks to dogs using a novel combination of fipronil, amitraz and (S)-methoprene. Vet Parasitol 2011; 179: 343-350
74 Adaszek Ł, Banach T, Bartnicki M. et al. Application the mass spectrometry MALDI-TOF technique for detection of Babesia canis canis infection in dogs. Parasitol Res 2014; 113 (11) 4293-4295
75 Sainz A, Roura X, Miro G. et al. Guideline for veterinary practitioners on canine ehrlichiosis and anaplasmosis in Europe. Parasit Vectors 2015; 8: 75
76 Vercammen F, De Deken R, Maes L. Clinical and serological observations on experimental infections with Babesia canis and its diagnosis using the IFAT. Parasite 1995; 2: 407-410
77 Fukumoto S, Sekine Y, Xuan X. et al. Serodiagnosis of canine Babesia gibsoni infection by enzyme-linked immunosorbent assay with recombinant P50 expressed in Escherichia coli. J Parasitol 2004; 90: 387-391
78 Uilenberg G, Franssen FF, Perie NM, Spanjer AA. Three groups of Babesia canis distinguished and a proposal for nomenclature. Vet Q 1989; 11: 33-40
79 Yamane I, Thomford JW, Gardner IA. et al. Evaluation of the indirect fluorescent antibody test for diagnosis of Babesia gibsoni infections in dogs. Am J Vet Res 1993; 54: 1579-1584
80 Kovačević Filipović MM, Beletić AD, Ilić Božović AV. et al. Molecular and serological prevalence of Anaplasma phagocytophilum, A. platys, Ehrlichia canis, E. chaffeensis, E. ewingii, Borrelia burgdorferi, Babesia canis, B. gibsoni and B. vogeli among among Clinically Healthy Outdoor Dogs in Serbia. Vet Parasitol Reg Stud Reports 2018; 14: 117-122
81 Maggi RG, Birkenheuer AJ, Hegarty BC. et al. Comparison of serological and molecular panels for diagnosis of vector-borne diseases in dogs. Parasit Vectors 2014; 7: 127
82 Conrad P, Thomford J, Yamane I. et al. Hemolytic anemia caused by Babesia gibsoni infection in dogs. J Am Vet Med Assoc 1991; 199: 601-605
Teil 2 - ab Prophylaxe:
1 Zahler M, Rinder H, Schein E. et al. Detection of a new pathogenic Babesia microti-like species in dogs. Vet Parasitol 2000; 89 (03) 241-248
2 Zahler M, Rinder H, Zweygarth E. et al. Babesia gibsoni of dogs from North America and Asia belong to different species. Parasitology 2000; 120 (04) 365-369
3 Beck R, Vojta L, Mrljak V. et al. Diversity of Babesia and Theileria species in symptomatic and asymptomatic dogs in Croatia. Int J Parasitol 2009; 39 (07) 843-848
4 Strobl A, Pantchev N, Martin L. et al. Co-infection with Babesia canis and Babesia gibsoni in a dog. Acta Vet Hung 2021;
5 Miro G, Checa R, Paparini A. et al. Theileria annae (syn. Babesia microti-like) infection in dogs in NW Spain detected using direct and indirect diagnostic techniques: clinical report of 75 cases. Parasit Vectors 2015; 8: 217
6 Matjila PT, Leisewitz AL, Jongejan F. et al. Molecular detection of tick-borne protozoal and ehrlichial infections in domestic dogs in South Africa. Vet Parasitol 2008; 155: 152-157
7 Solano-Gallego L, Capri A, Pennisi MG. et al. Acute febrile illness is associated with Rickettsia spp infection in dogs. Parasit Vectors 2015; 8: 216
8 Vercammen F, De Deken R, Maes L. Clinical and serological observations on experimental infections with Babesia canis and its diagnosis using the IFAT. Parasite 1995; 2: 407-410
9 Di Cicco MF, Downey ME, Beeler E. et al. Re-emergence of Babesia conradae and effective treatment of infected dogs with atovaquone and azithromycin. Vet Parasitol 2012; 187: 23-27
10 Lin EC, Chueh LL, Lin CN. et al. The therapeutic efficacy of two antibabesial strategies against Babesia gibsoni . Vet Parasitol 2012; 186: 159-164
11 Vercammen F, De Deken R, Maes L. Prophylactic treatment of experimental canine babesiosis (Babesia canis) with doxycycline. Vet Parasitol 1996; 66: 251-255
12 Lin MY, Huang HP. Use of a doxycycline-enrofloxacin-metronidazole combination with/without diminazene diaceturate to treat naturally occurring canine babesiosis caused by Babesia gibsoni . Acta Vet Scand 2010; 52: 27
13 Ayoob AL, Hackner SG, Prittie J. Clinical management of canine babesiosis,. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio) 2010; 20 (01) 77-89
14 Aktas M, Vinclair P, Lefebvre HP. et al. In vivo quantification of muscle damage in dogs after intramuscular administration of drugs. Br Vet J 1995; 151 (02) 189-196
15 Grundy SA, Barton C. Influence of drug treatment on survival of dogs with immune-mediated hemolytic anemia: 88 cases (1989–1999). J Am Vet Med Assoc 2001; 218: 543-546
16 Scott-Moncrieff JC, Treadwell NG, McCullough SM. et al. Hemostatic abnormalities in dogs with primary immune-mediated hemolytic anemia. J Am Anim Hosp Assoc 2001; 37: 220-227
17 Kidd L, Mackman N. Prothrombotic mechanisms and anticoagulant therapy in dogs with immune-mediated hemolytic anemia. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio) 2013; 23: 3-13
18 Solano-Gallego L, Baneth G. Babesiosis in dogs and cats – expanding parasitological and clinical spectra. Vet Parasitol 2011; 181: 48-60
19 Irwin PJ. Canine babesiosis: from molecular taxonomy to control. Parasit Vectors 2009; Suppl 1(Suppl 1): S4
20 Bourdoiseau G. Canine babesiosis in France. Vet Parasitol 2006; 138: 118-125
21 Eichenberger RM, Riond B, Willi B. et al. Prognostic markers in acute Babesia canis infections. J Vet Intern Med 2016; 30: 174-182
22 Brandao LP, Hagiwara MK, Myiashiro SI. Humoral immunity and reinfection resistance in dogs experimentally inoculated with Babesia canis and either treated or untreated with imidocarb dipropionate. Vet Parasitol 2003; 114: 253-265
23 Jefferies R, Ryan UM, Jardine J. et al. Blood, Bull Terriers and Babesiosis: further evidence for direct transmission of Babesia gibsoni in dogs. Aust Vet J 2007; 85: 459-463
24 Birkenheuer AJ, Levy MG, Breitschwerdt EB. Efficacy of combined atovaquone and azithromycin for therapy of chronic Babesia gibsoni (Asian genotype) infections in dogs. J Vet Intern Med 2004; 18: 494-498
25 Birkenheuer AJ. Detection and molecular characterization of a novel large Babesia species in a dog. Vet Parasitol 2004; 124(3 – 4): 151-160
26 ESCCAP. Bekämpfung von Ektoparasiten (Flöhe, Zecken, Läuse, Haarlinge, Sand- und Stechmücken) bei Hunden und Katzen. Deutsche Adaption der ESCCAP-Empfehlung Nr. 3, Februar 2022. Im Internet (Stand: August 2022): https://www.esccap.org/uploads/docs/yc6cp5ga_22022EktoparasitenEmpfehlung3.pdf
27 Universität Leipzig. Vetidata – Veterinärmedizinischer Informationsdienst für Arzneimittelanwendung, Toxikologie und Arzneimittelrecht in Kooperation mit dem Bundesministerium für Verbraucherschutz und Lebensmittelsicherheit. Im Internet: https://vetidata.de
28 Taenzler J, Liebenberg J, Roepke RKA. et al. Prevention of transmission of Babesia canis by Dermacentor reticulatus ticks to dogs treated orally with fluralaner chewable tablets (Bravecto ™). Parasit Vectors 2015; 8: 305-311
29 Beck W. Update zur Ektoparasitenbekämpfung. Veterinärspiegel 2021; 31: 56-64
30 Halos L, Baneth G, Beugnet F. et al. Defining the concept of ‚tick repellency‘ in veterinary medicine. Parasitol 2012; 139: 419-423
31 Eckert J, Deplazes P. Vakzinen gegen Parasiten bei Haustieren. Tierarztl Prax 1996; 24: 322-329
32 Moreau Y, Vidor E, Bissuel G. et al. Vaccination against canine babesiosis: an overview of field observations. Trans R Soc Trop Med Hyg 1989; 83 (Suppl) 95-96
33 Schetters TP, Kleuskens JA, Scholtes NC. et al. Vaccination of dogs against Babesia canis infection using antigens from culture supernatants with emphasis on clinical babesiosis. Vet Parasitol 1994; 52: 219-233
34 Schetters TP, Kleuskens JA, Scholtes NC. et al. Vaccination of dogs against Babesia canis infection. Vet Parasitol 1997; 73: 35-41
35 Schetters T. Vaccination against canine babesiosis. Trends Parasitol 2005; 21: 179-184
36 Schetters TP, Moubri K, Cooke BM. Comparison of Babesia rossi and Babesia canis isolates with emphasis on effects of vaccination with soluble parasite antigens: a review. J S Afr Vet Assoc 2009; 80: 75-78
37 Fukumoto S, Tamaki Y, Okamura M. et al. Primeboost immunization with DNA followed by a recombinant vaccinia virus expressing P50 induced protective immunity against Babesia gibsoni infection in dogs. Vaccine 2007; 25: 1334-1341
38 Fukumoto S, Tamaki Y, Igarashi I. et al. Immunogenicity and growth inhibitory efficacy of the prime-boost immunization regime with DNA followed by recombinant vaccinia virus carrying the P29 gene of Babesia gibsoni in dogs. Exp Parasitol 2009; 123: 296-301
39 Eckert J, Friedhoff KT, Zahner H, Deplazes P. Lehrbuch der Parasitologie für die Tiermedizin. Stuttgart: Enke; 2005
40 Uilenberg G, Verdiesen PA, Zwart D. Imidocarb: a chemoprophylactic experiment with Babesia canis . Vet Q 1981; 3: 118-123
41 Vercammen F, De Deken R, Maes L. Clinical and serological observations on experimental infections with Babesia canis and ist diagnosis using the IFAT. Parasite 1995; 2: 407-410
42 Wozniak EJ, Barr BC, Thomford JW. et al. Clinical, anatomic, and immunopathologic characterization of Babesia gibsoni infection in the domestic dog (Canis familiaris). J Parasitol 1997; 83: 692-699
43 Trotta M, Carli E, Novari G. et al. Clinicopathological findings, molecular detection and characterization of Babesia gibsoni infection in a sick dog from Italy. Vet Parasitol 2009; 165: 318-322
44 Boozer L, Macintire D. Babesia gibsoni: An emerging pathogen in dogs. Compendium on Continuing Education for the Practising Veterinarian – North American Edition 2005; 27 (01) 33-42
45 Mierzejewska EJ, Welc-Faleciak R, Bednarska M. et al. The first evidence for vertical transmission of Babesia canis in a litter of Central Asian Shepherd dogs. Ann Agric Environ Med 2014; 21 (03) 500-503
46 Jeagley TJ, Reichard MV, Hempstead JE. et al. Detection of Babesia gibsoni and the canine small Babesia ‘Spanish isolate’ in blood samples obtained from dogs confiscated from dogfighting operations. J Am Vet Med Assoc 2009; 235: 535-539
47 Birkenheuer AJ, Levy MG, Breitschwerdt EB. Efficacy of combined atovaquone and azithromycin for therapy of chronic Babesia gibsoni (Asian genotype) infections in dogs. J Vet Intern Med 2004; 18: 494-498
48 Birkenheuer AJ, Levy MG, Stebbins M. et al. Serosurvey of anti-Babesia antibodies in stray dogs and American pit bull terriers and American staffordshire terriers from North Carolina. J Am Anim Hosp Assoc 2003; 39: 551-557
49 Springer A, Strube C. Buntzecken in Deutschland. Dt Tierärztebl 2021; 69 (01) 20-23
50 Beck S, Schein E, Baldermann C. et al. Zeckeninfestation und Zeckenprophylaxe bei Hunden im Raum Berlin/Brandenburg – Ergebnisse einer Fragebogenstudie. Berl Münch Tierärztl Wochenschr 2013; 126: 69-76
