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Spezial: Blutsystem der KatzeDas Blut der Katze – Mögliche Unverträglichkeitsreaktionen

Bei Katzen besteht das Risiko von Unverträglichkeitsreaktionen bei A-B-inkompatiblen Bluttransfusionen sowie bei Welpen von einer sog. neonatalen Isoerythrolyse. Um dies zu verhindern, ist es für eine Zucht und im Vorfeld von Transfusionen essenziell die Blutgruppe zu kennen. 

Blood sample for coagulation test in the laboratory
angellodeco / stock.adobe.com

Neonatale Isoerythrolyse

Von der neonatalen Isoerythrolyse betroffen sind nur neugeborene Katzen mit den Blutgruppen A und C, deren Mutter Blutgruppe B hat [18]. Zudem werden die Katzenwelpen mit den Blutgruppen A und C gesund geboren, da die feline Plazenta den Übertritt von Alloantikörpern verhindert [2], [26]. Maternale Antikörper, sowohl gegen Infektionskrankheiten als auch gegen Erythrozyten mit Antigen A, werden über das Kolostrum und die Milch der Kätzin übertragen. Dies findet nur während der ersten 12–16 Stunden nach der Geburt statt [26]. Danach produziert der Magen der Neugeborenen Säuren, die Proteine zersetzen, und die Verbindungen zwischen den Enterozyten des Darms schließen sich, sodass jeder weitere Übergang von Immunglobulinen oder anderen intakten Proteinen nach dem 1. Lebenstag unterbunden wird [26], [27].

In Rassekatzen-Zuchten kann die neonatale Isoerythrolyse bei erst- und mehrgebärenden Katzen mit der Blutgruppe B auftreten, wenn sie mit Katern verpaart werden, die die Blutgruppe A oder C haben. Dies stellt eine bedeutende, aber vermeidbare Ursache für die Mortalität von Katzenwelpen und für das fading kitten syndrome dar [27]. Die Katzenwelpen mit der Blutgruppe A oder C, die gesund geboren wurden, können nach Aufnahme von Kolostrum innerhalb von Stunden eine neonatale Isoerythrolyse entwickeln. Diese manifestiert sich in Form plötzlicher Todesfälle ohne jegliche weitere klinische Anzeichen, oder betroffene Katzenwelpen zeigen eine schwere Pigmenturie aufgrund massiver Hämoglobinurie und versterben dann innerhalb der 1. Lebenswoche. Manche überleben und entwickeln innerhalb von Tagen Anämie und Ikterus. Binnen 2 Wochen kann eine Schwanzspitzennekrose auftreten, die vermutlich durch Kälteagglutinine verursacht wird [26], [27], [28], [29], [30].

In Einzelfällen ist die Darmschranke bereits zum Zeitpunkt der Geburt geschlossen, sodass die Aufnahme der Immunglobuline durch den Katzenwelpen verhindert wird. Daher kann es vorkommen, dass einige theoretisch gefährdete Katzenwelpen keine neonatale Isoerythrolyse entwickeln [26], [27]. Somit erkranken nicht alle Katzenwelpen mit den Blutgruppen A und C, deren Mutter die Blutgruppe B hat, an der neonatalen Isoerythrolyse.

Katzenwelpen der Blutgruppe B, deren Mütter Blutgruppe A haben, entwickeln keine klinischen Symptome einer neonatalen Isoerythrolyse. Dies ist durch die niedrige Prävalenz von Anti-B-Antikörpern bei Kätzinnen mit Blutgruppe A bedingt.

 

 

In der Regel lassen sich neugeborene Katzenwelpen mit diesen klinischen Symptomen nicht wirklich erfolgreich behandeln. Die neonatale Isoerythrolyse kann allerdings verhindert werden, indem die Blutgruppen angehender Zuchtkatzen vorab bestimmt und Verpaarungen zwischen Kätzinnen mit Blutgruppe B und Katern mit den Blutgruppen A oder C vermieden werden. Findet allerdings eine solche Verpaarung statt, müssen Katzenwelpen mit den Blutgruppen A oder C in den ersten 16–24 Stunden nach der Geburt konsequent von ihrer Mutter mit Blutgruppe B getrennt und entweder mit einem geeigneten Milchaustauscher gefüttert oder am 1. Lebenstag von einer laktierenden Kätzin mit Blutgruppe A gesäugt werden [2], [26], [27].

Bei Verabreichung von Milchaustauscher sollte erwogen werden, Plasma peroral oder parenteral zu supplementieren, wobei eine Katze mit Blutgruppe A als Spender herangezogen werden sollte. Es wurde zwar gezeigt, dass diese Maßnahme in gut betreuten Katzenzuchten nicht erforderlich ist, sie kann aber in Katzenzuchten mit erhöhtem Infektionsrisiko hilfreich sein.

Akute hämolytische Transfusionsreaktionen

Schon die erste Transfusion von Vollblut oder Erythrozytenkonzentrat kann bei der Katze lebensbedrohliche akute hämolytische Transfusionsreaktionen hervorrufen, wenn die Blutgruppen von Spender- und Empfängertier nicht zusammenpassen. Neben experimentellen Studien wurden hierzu auch einige klinische Fallberichte publiziert [1], [23], [24], [25].

Während die normale Lebensdauer von transfundierten A-B-kompatiblen Erythrozyten bei ~70–75 Tagen liegt (Halbwertszeit: ~35 Tage) [3], beträgt die Lebensdauer bei einer unpassenden Transfusion lediglich Stunden bis wenige Tage, was die Transfusion unwirksam macht [3]. Es konnte festgestellt werden, dass einige Empfängertiere ihre Blutgruppe vorübergehend änderten – verursacht durch die Transfusion von Blut nicht übereinstimmender Blutgruppen [24], [25]. Darüber hinaus entwickeln Katzenpatienten, die inkompatibles Blut erhalten, keinen oder nur einen unzureichenden Anstieg des Hämatokrits, es kommt zu Hämoglobinämie, Hämoglobinurie, Ikterus und häufig zum Tod. Klinisch zeigen Katzen nach inkompatibler Transfusion keine klinische Verbesserung, sondern werden stattdessen lethargischer, hypotensiv und bradykard [1]. Bereits 2 ml an inkompatiblem Blut können ausreichen, um eine fatale akute hämolytische Transfusionsreaktion hervorzurufen [1].

Bei Katzen gibt es keinen Universalspender. Wird Blut der Blutgruppe A Empfängern mit Blutgruppe B transfundiert, kann dies Berichten zufolge schwere, lebensbedrohliche Reaktionen hervorrufen[1], [3], [18], [23], [24], [25]. Die Transfusion von Blut der Blutgruppe B an Empfänger mit Blutgruppe A kann ebenso zu einer schweren akuten hämolytischen Transfusionsreaktion führen, vor allem bedingt durch die Anti-A-Antikörper im transfundierten Blut der Blutgruppe B [18]. Aufgrund der Häufigkeit der Blutgruppen erscheint es allerdings unwahrscheinlich, dass eine Katze mit der seltenen Blutgruppe B als Spender für eine Transfusion bei einem Empfänger mit der Blutgruppe A herangezogen wird. Nichtsdestotrotz ist es unerlässlich, vor der ersten Transfusion bei Katzen sowohl beim Empfänger als auch beim Spender die Blutgruppe nach dem ABC-Blutgruppensystem zu bestimmen, oder, falls dies nicht möglich ist, eine Kreuzprobe durchzuführen [2].

In vitro und in vivo wurde nachgewiesen, dass Hunde-Erythrozyten nach einer Transfusion an Katzen äußerst schnell zerstört werden. Tatsächlich scheinen Xenotransfusionen eine schwere intravaskuläre Hämolyse und die vollständige Lyse aller transfundierten Erythrozyten vom Hund innerhalb von 4 Tagen zu bewirken [15]. Darüber hinaus werden grundsätzlich inkompatible Ergebnisse in der Kreuzprobe (Major- und Minorreaktion) zwischen Hunde- und Katzenblut beobachtet. Wegen des natürlichen Vorkommens von Interspezies-Alloantikörpern [15], [31], wird jede Kreuzprobe zwischen kaninem und felinem Blut Inkompatibilitäten zeigen. Deshalb sind Xenotransfusionen, ebenso wie inkompatible A-B-Transfusionen, ineffektiv sowie schädlich und sollten bei Katzen unterlassen werden.

 

  • 1 Auer L, Bell K, Coates S. Blood transfusion reactions in the cat. J Am Vet Med Assoc 1982; 180 (07) 729-730
  • 2 Giger U. Blood typing and crossmatching to ensure blood compatibility. In: Bonagura JD, Twedt DC. eds. Kirk’s Current Veterinary Therapy. XV ed.. Missouri: St. Louis; 2014: 143
  • 3 Giger U, Bücheler J. Transfusion of type-A and type-B blood to cats. J Am Vet Med Assoc 1991; 198 (03) 411-418
  • 4 Kehl A, Heimberger K, Langbein-Detsch I. et al. Molecular characterization of blood type A, B, and C (AB) in domestic cats and a CMAH genotyping scheme. PLoS One 2018; 13 (09) e0204287
  • 5 Spada E, Miglio A, Proverbio D. et al. Signalment and blood types in cats being evaluated as blood donors at two italian university blood banks. Vet Med Int 2014; 2014: 704836
  • 6 Gandolfi B, Grahn RA, Gustafson NA. et al. A novel variant in CMAH is associated with blood type AB in Ragdoll cats. PLoS One 2016; 11 (05) e0154973
  • 7 Kehl A, Mueller E, Giger U. CMAH genotyping survey for blood types A, B and C (AB) in purpose-bred cats. Anim Genet 2019; 50 (03) 303-306
  • 8 Proverbio D, Spada E, Perego R. et al. Assessment of blood types of Ragdoll cats for transfusion purposes. Vet Clin Pathol 2013; 42 (02) 157-162
  • 9 Tasker S, Barker EN, Day MJ. et al. Feline blood genotyping versus phenotyping, and detection of non-AB blood type incompatibilities in UK cats. J Small Anim Pract 2014; 55 (04) 185-189
  • 10 Forcada Y, Guitian J, Gibson G. Frequencies of feline blood types at a referral hospital in the south east of England. J Small Anim Pract 2007; 48 (10) 570-573
  • 11 Vieira SM, Ferreira RRF, de Matos AJ. et al. Distribution of feline AB blood types: a review of frequencies and its implications in the Iberian Peninsula. JFMS Open Rep 2017; 3 (02) 2055116917727693
  • 12 Weinstein NM, Blais MC, Harris K. et al. A newly recognized blood group in domestic shorthair cats: the Mik red cell antigen. J Vet Intern Med 2007; 21 (02) 287-292
  • 13 McClosky ME, Cimino Brown D, Weinstein NM. et al. Prevalence of naturally occurring non-AB blood type incompatibilities in cats and influence of crossmatch on transfusion outcomes. J Vet Intern Med 2018; 32 (06) 1934-1942
  • 14 Bovens C, Gruffydd-Jones T. Xenotransfusion with canine blood in the feline species: review of the literature. J Feline Med Surg 2013; 15 (02) 62-67
  • 15 Euler CC, Raj K, Mizukami K. et al. Xenotransfusion of anemic cats with blood compatibility issues: pre- and posttransfusion laboratory diagnostic and crossmatching studies. Vet Clin Pathol 2016; 45 (02) 244-253
  • 16 Griot-Wenk ME, Callan MB, Casal ML. et al. Blood type AB in the feline AB blood group system. Am J Vet Res 1996; 57 (10) 1438-1442
  • 17 Giger U, Bucheler J, Patterson DF. Frequency and inheritance of A and B blood types in feline breeds of the United States. J Hered 1991; 82 (01) 15-20
  • 18 Griot-Wenk ME, Giger U. Feline transfusion medicine. Blood types and their clinical importance. Vet Clin North Am Small Anim Pract 1995; 25 (06) 1305-1322
  • 19 Griot-Wenk M, Pahlsson P, Chisholm-Chait A. et al. Biochemical characterization of the feline AB blood group system. Anim Genet 1993; 24 (06) 401-407
  • 20 Bighignoli B, Niini T, Grahn RA. et al. Cytidine monophospho-N-acetylneuraminic acid hydroxylase (CMAH) mutations associated with the domestic cat AB blood group. BMC Genet 2007; 8: 27
  • 21 Omi T, Nakazawa S, Udagawa C. et al. Molecular characterization of the cytidine monophosphate-N-acetylneuraminic acid hydroxylase (CMAH) gene associated with the feline AB blood group system. PLoS One 2016; 11 (10) e0165000
  • 22 Bücheler J, Giger U. Alloantibodies against A and B blood types in cats. Vet Immunol Immunopathol 1993; 38 (03/04) 283-295
  • 23 Giger U, Akol KG. Acute hemolytic transfusion reaction in an Abyssinian cat with blood type B. J Vet Intern Med 1990; 4 (06) 315-316
  • 24 Niggemeier A, Haberstroh HF, Nelson VE. et al. An accidental transfusion of a type A kitten with type B blood causes a transient switch from blood type A to B. J Vet Intern Med 2000; 14 (02) 214-216
  • 25 Koenig A, Maglaras Ryan C, Giger U. Acute hemolytic reaction due to A-B mismatched transfusion on a cat: transient AB blood type and blood compatibility testing results. J Vet Emerg Crit Care. (in press)
  • 26 Casal ML, Jezyk PF, Giger U. Transfer of colostral antibodies from queens to their kittens. Am J Vet Res 1996; 57 (11) 1653-1658
  • 27 Giger U, Casal ML. Feline colostrum – friend or foe: maternal antibodies in queens and kittens. J Reprod Fertil Suppl 1997; 51: 313-316
  • 28 Hubler M, Kaelin S, Hagen A. et al. Feline neonatal isoerythrolysis in two litters. J Small Anim Pract 1987; 28 (09) 833-838
  • 29 Silvestre-Ferreira AC, Pastor J. Feline neonatal isoerythrolysis and the importance of feline blood types. Vet Med Int 2010; 2010: 753726
  • 30 Axnér E. A questionnaire on survival of kittens depending on the blood groups of the parents. J Feline Med Surg 2014; 16 (10) 781-787
  • 31 Priolo V, Masucci M, Spada E. et al. Naturally occurring antibodies in cats against dog erythrocyte antigens and vice versa. J Feline Med Surg 2018; 20 (08) 690-695
  • 32 Reid ME, Denomme GA. DNA-based methods in the immunohematology reference laboratory. Transfus Apher Sci 2011; 44 (01) 65-72
  • 33 El-Sayed YS, Mohamed OI, Ashry KM. et al. Using species-specific repeat and PCR-RFLP in typing of DNA derived from blood of human and animal species. Forensic Sci Med Pathol 2010; 6 (03) 158-164
  • 34 Sylvane B, Prittie J, Hohenhaus AE. et al. Effect of cross-match on packed cell volume after transfusion of packed red blood cells in transfusion-naïve anemic cats. J Vet Intern Med 2018; 32 (03) 1077-1083
  • 35 Stieger K, Palos H, Giger U. Comparison of various blood-typing methods for the feline AB blood group system. Am J Vet Res 2005; 66 (08) 1393-1399
  • 36 Seth M, Jackson KV, Winzelberg S. et al. Comparison of gel column, card, and cartridge techniques for dog erythrocyte antigen 1.1 blood typing. Am J Vet Res 2012; 73 (02) 213-219
  • 37 Seth M, Jackson KV, Giger U. Comparison of five blood-typing methods for the feline AB blood group system. Am J Vet Res 2011; 72 (02) 203-209
  • 38 Spada E, Proverbio D, Baggiani L. et al. Evaluation of an immunochromatographic test for feline AB system blood typing. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio) 2016; 26 (01) 137-141
  • 39 Hourani L, Weingart C, Kohn B. Evaluation of a novel feline AB blood typing device. J Feline Med Surg 2014; 16 (10) 826-831
  • 40 Proverbio D, Spada E, Baggiani L. et al. Assessment of a gel column technique for feline blood typing. Vet Res Commun 2009; 33 (Suppl. 01) 201-203
  • 41 Leidinger J, Leidinger E, Giger U. Verteilung und Bedeutung der Blutgruppen A und B bei Haus- und Rassekatzen in Oesterreich. Wien Tierärztl Monatsschr 1993; 80: 10-14
  • 42 Jensen AL, Olesen AB, Arnbjerg J. Distribution of feline blood types detected in the Copenhagen area of Denmark. Acta Vet Scand 1994; 35 (02) 121-124
  • 43 Barrot A, Buttin R, Linsart A. et al. Frequency of feline blood types in non-pedigree cats in France. Rev Med Vet 2017; 168: 235-240
  • 44 Haarer M, Grünbaum EG. [Blood group typing in the cat]. Tierarztl Prax 1993; 21 (04) 339-343
  • 45 Mylonakis ME, Koutinas AF, Saridomichelakis M. et al. Determination of the prevalence of blood types in the non-pedigree feline population in Greece. Vet Rec 2001; 149 (07) 213-214
  • 46 Bagdi N, Magdus M, Leidinger E. et al. Frequencies of feline blood types in Hungary. Acta Vet Hung 2001; 49 (04) 369-375
  • 47 Juvet F, Brennan S, Mooney CT. Assessment of feline blood for transfusion purposes in the Dublin area of Ireland. Vet Rec 2011; 168 (13) 352
  • 48 Proverbio D, Spada E, Baggiani L. et al. Comparison of gel column agglutination with monoclonal antibodies and card agglutination methods for assessing the feline AB group system and a frequency study of feline blood types in northern Italy. Vet Clin Pathol 2011; 40 (01) 32-39
  • 49 Giger U, Gorman N, Hubler M. et al. Frequencies of feline A and B blood types in Europe. Anim Genet 1992; 23: 12
  • 50 Marques C, Ferreira M, Gomes JF. et al. Frequency of blood type A, B, and AB in 515 domestic shorthair cats from the Lisbon area. Vet Clin Pathol 2011; 40 (02) 185-187
  • 51 Silvestre-Ferreira AC, Pastor J. et al. Frequencies of feline blood types in northern Portugal. Vet Clin Pathol 2004; 33 (04) 240-243
  • 52 Hubler M, Arnold S, Casal M. et al. Die Blutgruppenverteilung bei den Hauskatzen in der Schweiz. Schweiz Arch Tierheilk 1993; 135: 231-235
  • 53 Arikan S, Gurkan M, Ozaytekin E. et al. Frequencies of blood type A, B and AB in non-pedigree domestic cats in Turkey. J Small Anim Pract 2006; 47 (01) 10-13